免疫共沉淀（Co-Immunoprecipitation,Co-IP）
一、實驗原理
以（抗體和抗原）之間的專一性作用為基礎的用于研究（蛋白質相互作用）的經典方法。是確定兩種蛋白質在完整（細胞內生理性）相互作用的有效方法。如果用蛋白質X的抗體免疫沉淀X，那么與X在體內結合的蛋白質Y也能沉淀下來。
CO-IP應用與IP區別
1、測定兩種目標蛋白質是否在體內結合
2、確定一種特定蛋白質的新的作用搭檔
CO-IP與IP只取決于檢測焦點是初級靶分子（抗原）還是次級靶分子（相互作用蛋白）
二、實驗過程
1、提取蛋白。
2、在細胞裂解液中加入抗X的抗體。
3、孵育后再加入Protein A或G(于Agarose 或magnetic beads等介質上)。
若細胞中有與興趣蛋白結合的目的蛋白，就可以形成復合物：“Y—X—抗X抗體—Protein A或G"
4、經變性、聚丙烯酰胺凝膠電泳，復合物又被分開。（xy抗原、x抗體）。
5、western blot分析，質譜分析。
（Protein A是一種金黃色葡萄球菌細胞壁蛋白質，能特異性地與人和哺乳動物抗體（主要是IgG）的Fc區結合。）
ProteinA/G的作用及原理
“捕獲”抗體，形成復合物，
抗體-目的蛋白-ProteinA/G beads 非共價健結合
ProteinA/G- beads 共價結合
三、CO-IP特征
優點：
1、相互作用的蛋白質都是經翻譯后修飾的，處于天然狀態。
2、蛋白的相互作用是在自然狀態下進行的，可以避免人為的影響。
3、可以分離得到天然狀態的相互作用蛋白復合物。
局限性：
1、可能檢測不到低親和力和瞬間的蛋白質－蛋白質相互作用
2、兩種蛋白質的結合可能不是直接結合，有第三者在中間起橋梁作用；
3、必須在實驗前預測目的蛋白是什么，以選擇后檢測的抗體，若預測不正確，實驗就得不到結果
四、實驗的關鍵
1、實驗需要注意點就是抗體的性質。特別是多抗的特異性是問題。
2、為防止蛋白的分解、修飾，溶解抗原的緩沖液必須加蛋白酶抑制劑，低溫下進行實驗。
3、考慮抗體/緩沖液的比例。抗體過少就不能檢出抗原，過多則就不能沉降在beads上，殘存在上清。緩沖劑太少則不能溶解抗原，過多則抗原被稀釋。
4、確定蛋白間的相互作用是發生在細胞中，而不是由于細胞的溶解才發生的，這需要進行蛋白質的定位來確定。
五、注意的問題：
1、裂解液
(1)、細胞裂解采用溫和的裂解條件，不能破壞細胞內存在的所有蛋白質－蛋白質相互作用，多采用非離子變性劑（NP40或Triton X-100)。每種細胞的裂解條件是不一樣的，通過經驗確定。
(2)、不能用高濃度的變性劑（0.2％SDS)，細胞裂解液中要加各種酶抑制劑，如商品化的cocktail
2、免疫沉淀中抗體的選擇
3、抗體
使用對照抗體：（陰性和陽性）
陰性：單克隆抗體：同一種屬的IgG
兔多克隆抗體：正常兔IgG
陽性：細胞內某種蛋白的抗體（做膜蛋白A，用膜蛋白B）
六、未檢測到目得蛋白或蛋白很少
可能原因
1、樣品被蛋白酶降解：
添加蛋白酶抑制劑；所有操作保持4℃以下冰上操作并防止凍融
2、抗體濃度太低：
調整抗體濃度，必要時設立濃度梯度，摸索較佳濃度
3、抗抗體親合力太低：
選用適合于IP和/或IB的相應抗體
4、IP抗體未與珠子結合：
選用適合于IP的相應珠子，正確保存防止變質或干燥
5、Tag未暴露在融合蛋白構象的表面：
改變tag融合表達部位
6、裂解液嚴謹度太高：
改用低嚴謹度裂解液
七、目得蛋白高背景
可能原因
1、非特異蛋白結合：
（1）在無血清培養液中裂解細胞；
（2）在免疫沉淀前用protein (G/A)珠子預洗，
（3）免疫沉淀后增加漂洗次數和嚴謹度（高鹽或去垢劑）
2、裂解液嚴謹度太低：
改用高嚴謹度裂解液。
3、實驗儀器或液體被污染：
使用潔凈的儀器或液體。
4、轉移膜上的非特異吸附：
戴手套，用鑷子夾取，不要接觸膜轉移面。
上海市楊浦區國康路100號2層
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